User:Ana Luisa Van Innis/Notebook/Caderno BioMol/2010/04/27: Difference between revisions
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Considere as seguintes enzimas e respectivas sequências de restrição ( o traço indica a ligação fosfodiéster que é clivada):
Bam HI : G|GATCC Hae II: GG|CC Eco RI: G|AATTC Bgl II: A|GATCT
- Que característica invulgar tem a sequência de reconhecimento destas enzimas? A Caracteristica invulgar desta sequencia de reconhecimento é que as sequencias dos acidos nucleicos sao palindromicas, isto é a cadeia complementar (3'->5') é o espelho da primeira cadeia (5->3')
- Represente as extremidades 5’ e 3’ de moléculas de DNA cortadas com cada uma destas enzimas.
Bam HI:
xxxG GATCCxxx
xxxCCTAG Gxxx
Hae II:
---GG CC---
---GG CC---
Eco RI:
---G AATCC---
---CCTAA G---
Bg1 II:
---A GATCT---
---TCTAG A---
- É possível ligar uma molécula de DNA com extremidades cortadas por Bam HI a outra com extremidades cortadas por: BamHI? EcoRI? BglII?
apenas é possivel ligar extremidades de DNA cortadas com a mesma enzima de restrição e com a Bg1 II pois as cadeias sao complementares. Com a EcoRI nao é possivel pois as cadeias nas extremidades nao sao complementares.
- Em média, os fragmentos resultantes da digestão de DNA genómico humano com Bam HI serão maiores ou menores que os fragmentos resultantes de digestão com Hae II? Justifique. A Bam HI vai originar segmentos maiores do que os fragmentos da Hae II. no genoma humano é mais provavel encontrar sequencias GG|CC (que são apenas 4 nucleótidos) do que sequencias G|GATCC(com 6 nucleótidos). Assim, se houver mais locais de corte para a sequencia GGCC então os fragmentos serão menores.
Exercício 2 – Mapas de restrição As enzimas de restrição podem ser usadas para criar um mapa físico de uma molécula de DNA, reflectindo a sequência subjacente. Para isso, o fragmento de DNA a caracterizar é digerido com duas ou mais enzimas de restrição e analisado por electroforese em gel de agarose. Reveja os conceitos associados à electroforese em gel de agarose e veja um exemplo virtual da sua aplicação em http://www.vivo.colostate.edu/hbooks/genetics/biotech/gels/virgel.html
A que correspondem as bandas azuis no gel? As bandas azul-claro corespondem ao azul de xileno e as bandas azuis escuras correspondem ao azul de bromofenol. estas bandas sao necessarias para a orientação do processo de electroforese, de forma a poder localizar os fragmentos.
Considere a digestão do DNA plasmídeo pBR322 com PleI e BglI. Quantos fragmentos de DNA espera, e quantos consegue observar? Porquê? Com PleI espera-se 4 fragmentos e com BglI espera-se 3 fragmentos. Tanto com PleI e com o Bg1I observaM-se 3 fragmentos. isto é devido à concentraçao do gel, e nao consegue separar da melhor forma os fragmentos.
Que papel tem a concentração de agarose na análise de fragmentos de restrição? o aumento da concentraçao de agarose vai diminuiro tamanho dos poros.O aumento do tamanho dos poros vai permitir aumentar resolucao da electroforese(ou seja permite distinguir melhor os fragmentos). o aumento do tamanho dos poros vai permitir assim aumentar a resolucao da electroforese Se pretendesse determinar de forma rigorosa o tamanho dos fragmentos de DNA observados na electroforese, como poderia fazê-lo?
Os produtos de digestão do genoma do bacteriófago lambda (de 48510 pares de bases) são muito utilizados como marcadores de tamanhos moleculares em electroforeses de DNA. A enzima EcoRI corta o genoma do fago em 5 locais: 21227, 26106, 31749, 39175, 44980. Considere o resultado de uma electroforese apresentado em cima.
Poderá corresponder a uma digestão do DNA lambda com a enzima EcoRI ou não? Porquê? A imagem apresenta um resultado de uma electroforese com 6 bandas. Ora, se o Eco RI corta o genoma do fago em 5 locais, este resultado pode corresponder à digestão do fago pela enzima EcoRI.
Considerando que a quantidade total de DNA presente neste gel é de um micrograma, relativamente a cada uma das bandas observadas: Quantas moléculas de DNA estão na primeira e na última banda observadas no gel? Que quantidade de DNA está nas mesmas bandas?
Considere um segmento de DNA de 10000 pares de bases (bps) e os fragmentos formados após digestão com as enzimas EcoRI e HindIII:
DNA x EcoRI = 5000 + 3000 + 2000
DNA x HindIII = 5500 + 4500
DNA x EcoRI x HindIII = 5000 + 3000 + 1500 + 500
Com base nesta informação, construa o mapa de restrição
Utilize o Webcutter ou o NEBcutter para gerar um mapa de restrição da sequência do cDNA da beta-globina e indique:
uma enzima de corte único; uma enzima com dois cortes; uma enzima que não corta neste DNA.
(ACATTTGCTTCTGACACAACTGTGTTCACTAGCAACCTCAAACAGACACCATGGTGCATCTGACTCCTGA GGAGAAGTCTGCCGTTACTGCCCTGTGGGGCAAGGTGAACGTGGATGAAGTTGGTGGTGAGGCCCTGGGC AG|GCTGCTGGTGGTCTACCCTTGGACCCAGAGGTTCTTTGAGTCCTTTGGGGATCTGTCCACTCCTGATG CTGTTATGGGCAACCCTAAGGTGAAGGCTCATGGCAAGAAAGTGCTCGGTGCCTTTAGTGATGGCCTGGC TCACCTGGACAACCTCAAGGGCACCTTTGCCACACTGAGTGAGCTGCACTGTGACAAGCTGCACGTGGAT CCTGAGAACTTCAG|GCTCCTGGGCAACGTGCTGGTCTGTGTGCTGGCCCATCACTTTGGCAAAGAATTCA CCCCACCAGTGCAGGCTGCCTATCAGAAAGTGGTGGCTGGTGTGGCTAATGCCCTGGCCCACAAGTATCA CTAAGCTCGCTTTCTTGCTGTCCAATTTCTATTAAAGGTTCCTTTGTTCCCTAAGTCCAACTACTAAACT GGGGGATATTATGAAGGGCCTTGAGCATCTGGATTCTGCCTAATAAAAAACATTTATTTTCATTGCAAAA AAAAAAAAA)
[edit] Exercício 3 – Enzimas de restrição, RFLPs (Restriction Fragment Length Polymorphisms) e diagnóstico de mutações
As variações de sequência do genoma humano podem resultar na alterção de locais de corte de enzimas de restrição. As bandas polimórficas observadas após a electroforese de amostras de DNA genómico após tratamento com enzimas de restrição (RFLPs) constituíram o primeiro método laboratorial de “impressões digitais” de DNA para identificação de indivíduos em Medicina legal e forense.
Da mesma forma, mutações causadoras de doença podem gerar variações nos locais de corte de enzimas de restrição que permitem um fácil diagnóstico da sua presença.
O gene humano que codifica a beta-globina possui 3 locais de restrição DdeI. A distância entre o primeiro e o segundo local é de 175 bp. A distância entre o segundo e o terceiro local é de 201 bp. Em indivíduos com anemia de células falciformes ocorre uma mutação que anula o segundo local de restrição DdeI.
Represente esquematicamente o gene normal e o gene mutado, indicando as posições relativas dos 3 locais DdeI. Proponha um procedimento para diagnóstico desta mutação com base na técnica de PCR. Represente esquematicamente os resultados que espera observar ao analisar um indivíduo saudável, um portador da mutação (heterozigótico) e um doente (homozigótico). Retrieved from "http://openwetware.org/wiki/BIOMOL_LCS/2010:TP_6"
