User:Gabriela Santos/Notebook/GabrielaSantos BIOMOL/2010/04/20: Difference between revisions
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Cadeia codante (5’->3’) do gene beta globina | Cadeia codante (5’->3’) do gene beta globina | ||
CACACATATATATATATATTTTTTCTTTTCTTACCAGAAGGTTTTAATCCAAATAAGGAGA | |||
AGATATGCTTAGAACCGAGGTAGAGTTTTCATCCATTCTGTCCTGTAAGTATTTTGCATAT | |||
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A seguinte sequência corresponde ao mRNA da beta-globina: | A seguinte sequência corresponde ao mRNA da beta-globina: | ||
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EXON Genomic coordinates mRNA coordinates Length Identity | EXON Genomic coordinates mRNA coordinates Length Identity | ||
Exon 1 | Exon 1 | ||
546-687 1-142 142 100.0% | 546-687 1-142 142 100.0% | ||
Revision as of 13:31, 30 April 2010
 Project name
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Entry title
[edit] Introdução A técnica do PCR permite obter um grande número de cópias de uma sequência de DNA de interesse a partir de uma quantidade mínima de material. Nas aplicações de maior sensibilidade, uma única molécula de DNA pode ser suficiente para gerar milhões de cópias. Este é por issoo método base para um número muito grande de técnicas de diagnóstico molecular, incluindo em particular os diagnósticos que requerem sequenciação de DNA. A seguinte animação explica o funcionamento da técnica: PCR Quando é necessário proceder à caracterização da expressão de genes, é também possível aplicar a técnica de PCR acoplando-a a uma reacção de transcrição reversa, como explicado na seguinte animação: RT-PCR Note que o resultado de um ensaio de PCR ou RT-PCR tem geralmente de ser visualisado por separação electroforética dos produtos de reacção.
Proponha com detalhe adequado um procedimento experimental que permita o estudo da expressão do gene da beta-globina na família do nosso caso de estudo. Cadeia codante (5’->3’) do gene beta globina CACACATATATATATATATTTTTTCTTTTCTTACCAGAAGGTTTTAATCCAAATAAGGAGA AGATATGCTTAGAACCGAGGTAGAGTTTTCATCCATTCTGTCCTGTAAGTATTTTGCATAT TCTGGAGACGCAGGAAGAGATCCATCTACATATCCCAAAGCTGAATTATGGTAGACAAAAC TCTTCCACTTTTAGTGCATCAACTTCTTATTTGTGTAATAAGAAAATTGGGAAAACGATCT TCAATATGCTTACCAAGCTGTGATTCCAAATATTACGTAAATACACTTGCAAAGGAGGATG TTTTTAGTAGCAATTTGTACTGATGGTATGGGGCCAAGAGATATATCTTAGAGGGAGGGCT GAGGGTTTGAAGTCCAACTCCTAAGCCAGTGCCAGAAGAGCCAAGGACAGGTACGGCTGTC ATCACTTAGACCTCACCCTGTGGAGCCACACCCTAGGGTTGGCCAATCTACTCCCAGGAGC AGGGAGGGCAGGAGCCAGGGCTGGGCATAAAAGTCAGGGCAGAGCCATCTATTGCTTACAT TTGCTTCTGACACAACTGTGTTCACTAGCAACCTCAAACAGACACCATGGTGCATCTGACT CCTGAGGAGAAGTCTGCCGTTACTGCCCTGTGGGGCAAGGTGAACGTGGATGAAGTTGGTG GTGAGGCCCTGGGCAGGTTGGTATCAAGGTTACAAGACAGGTTTAAGGAGACCAATAGAAA CTGGGCATGTGGAGACAGAGAAGACTCTTGGGTTTCTGATAGGCACTGACTCTCTCTGCCT ATTGGTCTATTTTCCCACCCTTAGGCTGCTGGTGGTCTACCCTTGGACCCAGAGGTTC TTTGAGTCCTTTGGGGATCTGTCCACTCCTGATGCTGTTATGGGCAACCCTAAGGTGAAGG CTCATGGCAAGAAAGTGCTCGGTGCCTTTAGTGATGGCCTGGCTCACCTGGACAACC TCAAGGGCACCTTTGCCACACTGAGTGAGCTGCACTGTGACAAGCTGCACGTGGA TCCTGAGAACTTCAG'GGTGAGTCTATGGGACGCTTGATGTTTTCTTTCCCCTTCT TTTCTATGGTTAAGTTCATGTCATAGGAAGGGGATAAGTAACAGGGTACAGTTTAGAATGGGAAACAGACGAATGATTGCATCAGTGTGGAAGTCTCAGGATCGTTTTAGTTTCTTTTATTTGCTGTTCATAACAATTGTTTTCTTTTGTTTAATTCTTGCTTTCTTTTTTTTTCTTCTCCGCAATTTTTACTATTATACTTAATGCCTTAACATTGTGTATAACAAAAGGAAATATCTCTGAGATACATTAAGTAACTTAAAAAAAAACTTTACACAGTCTGCCTAGTACATTACTATTTGGAATATATGTGTGCTTATTTGCATATTCATAATCTCCCTACTTTATTTTCTTTTATTTTTAATTGATACATAATCATTATACATATTTATGGGTTAAAGTGTAATGTTTTAATATGTGTACACATATTGACCAAATCAGGGTAATTTTGCATTTGTAATTTTAAAAAATGCTTTCTTCTTTTAATATACTTTTTTGTTTATCTTATTTCTAATACTTTCCCTAATCTCTTTCTTTCAGGGCAATAATGATACAATGTATCATGCCTCTTTGCACCATTCTAAAGAATAACAGTGATAATTTCTGGGTTAAGGCAATAGCAATATCTCTGCATATAAATATTTCTGCATATAAATTGTAACTGATGTAAGAGGTTTCATATTGCTAATAGCAGCTACAATCCAGCTACCATTCTGCTTTTATTTTATGGTTGGGATAAGGCTGGATTATTCTGAGTCCAAGCTAGGCCCTTTTGCTAATCATGTTCATACCTCTTATCTTCCTCCCACAGCTCCTGGGCAACGTGCTGGTCTGTGTGCTGGCCCATCACTTTGGCAAAGAATTCACCCCACCAGTGCAGGCTGCCTATCAGAAAGTGGTGGCTGGTGTGGCTAATGCCCTGGCCCACAAGTATCACTAAGCTCGCTTTCTTGCTGTCCAATTTCTATTAAAGGTTCCTTTGTTCCCTAAGTCCAACTACTAAACTGGGGGATATTATGAAGGGCCTTGAGCATCTGGATTCTGCCTAATAAAAAACATTTATTTTCATTGCAATGATGTATTTAAATTATTTCTGAATATTTTACTAAAAAGGGAATGTGG A seguinte sequência corresponde ao mRNA da beta-globina: ACATTTGCTTCTGACACAACTGTGTTCACTAGCAACCTCAAACAGACACCATGGTGCATCTGACTCCTGAGGAGAAGTCTGCCGTTACTGCCCTGTGGGGCAAGGTGAACGTGGATGAAGTTGGTGGTGAGGCCCTGGGCAGGCTGCTGGTGGTCTACCCTTGGACCCAGAGGTTCTTTGAGTCCTTTGGGGATCTGTCCACTCCTGATGCTGTTATGGGCAACCCTAAGGTGAAGGCTCATGGCAAGAAAGTGCTCGGTGCCTTTAGTGATGGCCTGGCTCACCTGGACAACCTCAAGGGCACCTTTGCCACACTGAGTGAGCTGCACTGTGACAAGCTGCACGTGGATCCTGAGAACTTCAGGCTCCTGGGCAACGTGCTGGTCTGTGTGCTGGCCCATCACTTTGGCAAAGAATTCACCCCACCAGTGCAGGCTGCCTATCAGAAAGTGGTGGCTGGTGTGGCTAATGCCCTGGCCCACAAGTATCACTAAGCTCGCTTTCTTGCTGTCCAATTTCTATTAAAGGTTCCTTTGTTCCCTAAGTCCAACTACTAAACTGGGGGATATTATGAAGGGCCTTGAGCATCTGGATTCTGCCTAATAAAAAACATTTATTTTCATTGCAAAA AAAAAAAAA
Exon 1 546-687 1-142 142 100.0% Exon 2 818-1040 143-365 223 100.0% Exon 3 1891-2155 366-630 265 99.2% Depois da análise da sequência do gene foram encontradas 2 mutações, uma localizada no 2º exão e outra no 2ºintrão. 1ª Mutação localizada dentro do exão que leva ao aparecimento de um codão stop prematuro: 462 (substituição T->A), a partir do inicio da transcrição ou corresponde a posição 1008 da sequência fornecida dentro do 2ºexão. 2ª Mutação localizada dentro do intrão que leva ao splicing prematuro: 732 (substituição T->G), a partir do inicio da transcrição ou corresponde a posição 1278 da sequência fornecida dentro do 2ºintrão. (A amarelo o exão 2. A cinzento o intrão 2) Através do Blast primer procuramos os melhores primers que permitem amplificar a sequência do gene onde se encontram as nossas mutações. Não precisamos de amplificar o gene inteiro por ser um processo desnecessário e alem disso quanto maior for o fragmento a sequenciar mais caro sai. Como já conhecemos a posição das nossas mutações de interesse, que até se encontram próximas uma da outra no gene, basta amplificar a partir de alguns pares de bases antes da 1ª mutação ou do inicio do 2ºexão, até a algumas pares de bases depois da 2ª mutação ou em alternativa até ao fim do 2ºintrão. Neste caso os primers que escolhi são aqueles que têm um Tm à volta de 60 o que dá maior estabilidade à ligação e resulta numa amplificação mais especifica. Obtiveram-se estes 2 tipos de primers, que possibilitam amplificar a zona de interesse: Sequence (5'->3') Strand on template Length Start Stop Tm GC% Forward primer GGCCTGGCTCACCTGGACAAC Plus 21 131 151 59.64 66.67% Reverse primer GCAAAAGGGCCTAGCTTGGACTCA Minus 24 1038 1015 59.17 54.17% Product length 908 ou Sequence (5'->3') Strand on template Length Start Stop Tm GC% Forward primer GCCTGGCTCACCTGGACAACC Plus 21 132 152 59.64 66.67% Reverse primer GCAAAAGGGCCTAGCTTGGACTCA Minus 24 1038 1015 59.17 54.17% Product length 907
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