User:Margarida Gama-Carvalho/Notebook/Undergrad teaching/2010/04/27: Difference between revisions
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Utilizando uma mistura de fragmentos de DNA de tamanho conhecido (marcador) posso gerar uma recta de calibração em que relaciono a distância migrada (em cm) com o tamanho da molécula. Depois só tenho de medir a distância migrada pelos meus fragmentos desconhecidos e deduzir o seu tamanho a partir da recta. | Utilizando uma mistura de fragmentos de DNA de tamanho conhecido (marcador) posso gerar uma recta de calibração em que relaciono a distância migrada (em cm) com o tamanho da molécula. Depois só tenho de medir a distância migrada pelos meus fragmentos desconhecidos e deduzir o seu tamanho a partir da recta. | ||
5. Considere a imagem apresentada: | 5. Considere a imagem apresentada: | ||
5.1. Poderá corresponder a uma digestão do DNA lambda com a enzima EcoRI ou não? Porquê? | 5.1. Poderá corresponder a uma digestão do DNA lambda com a enzima EcoRI ou não? Porquê? | ||
Tendo em conta as posições de corte indicadas, a digestão do DNA lambda com EcoRI produz 6 fragmentos com os tamanhos de: 21226bp, 7421bp, 5804bp, 5643bp, 4878bp e 3530bp. Estes fragmentos são compatíveis com o número e distribuição das bandas observadas na imagem, pelo que é provável tratar-se da digestão de DNA lambda com EcoRI. | |||
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5.2. Considerando que a quantidade total de DNA presente neste gel é de um micrograma, relativamente a cada uma das bandas observadas: | 5.2. Considerando que a quantidade total de DNA presente neste gel é de um micrograma, relativamente a cada uma das bandas observadas: | ||
a. Quantas moléculas de DNA estão na primeira e na última banda observadas no gel? | a. Quantas moléculas de DNA estão na primeira e na última banda observadas no gel? | ||
b. Que quantidade de DNA está nas mesmas bandas? | b. Que quantidade de DNA está nas mesmas bandas? | ||
A primeira banda contém 21226bp/48510bp = 44% da quantidade total de DNA aplicado no gel, enquanto que a última banda corresponde a 7,3% (3530bp/48510bp). Desta forma, a quantidade de DNA presente é de 440ng para a primeira banda e 73ng para a última banda. | |||
Revision as of 15:44, 14 June 2010
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Enzimas de restriçãoExercício 1 – Extremidades e ligaçõesConsidere as seguintes enzimas e respectivas sequências de restrição ( o traço indica a ligação fosfodiéster que é clivada): Bam HI : G|GATCC Hae II: GG|CC Eco RI: G|AATTC Bgl II: A|GATCT 1. Que característica invulgar tem a sequência de reconhecimento destas enzimas? Trata-se de uma sequência "palindrómica", ou seja, quando lidas na direcção 5'-3', ambas as cadeias da molécula de DNA apresentam exactamenta a mesma sequência de nucleótidos. 2. Represente as extremidades 5’ e 3’ de moléculas de DNA cortadas com cada uma destas enzimas.
3. É possível ligar uma molécula de DNA com extremidades cortadas por Bam HI a outra com extremidades cortadas por: BamHI? EcoRI? BglII? É possível ligar extremidades geradas por Bam HI entre si, mas também com extremidades geradas pro BglII, uma vez que os nucleótidos desemparelhados são compatíveis. No entanto, não é possível ligar extremidades geradas por BamHI e EcoRI.
A digestão do genoma com BamHI deve gerar fragmentos de maiores dimensões, visto que o local de corte desta enzima tem menor probabilidade de surgir (6 nucleótidos vs 4 nucleótidos do local HaeII). Assim sendo, a enzima irá cortar o genoma um número menor de vezes e, logo, gerar fragmentos de maiores dimensões. Exercício 2 – Mapas de restrição1. A que correspondem as bandas azuis no gel? Aos corantes de electroforese usados para tornar visível a amostra durante a aplicação e para vizualisar a frente de migração. 2. Considere a digestão do DNA plasmídeo pBR322 com PleI e BglI. Quantos fragmentos de DNA espera, e quantos consegue observar? Porquê? A digestão com BglI produz 3 fragmentos, que se conseguem observar se de deixar correr a electroforese até ao fim do gel. A digestão com PleI produz 4 fragmentos, no entanto só se observam 2. Isto explica-se pelo facto de os fragmentos terem dimensões semelhantes entre si, não sendo separados de forma eficiente pelas condições de electroforese utilizadas. 3. Que papel tem a concentração de agarose na análise de fragmentos de restrição? A concentração de agarose impõe diferentes restrições à migração das moléculas de DNA no gel e vai determinar que gamas de tamanho vão apresentar um comportamento linear na separação. Concentrações demasiado altas impedem a migração de moléculas muito grandes, que não conseguem entrar no gel. Concentrações muito baixas não vão impôr restrições à migração de moléculas pequenas, que vão comportar-se de igual forma na electroforese. Assim, para cada gama de tamanhos a analisar é necessário escolher a concentração de agarose apropriada.
Utilizando uma mistura de fragmentos de DNA de tamanho conhecido (marcador) posso gerar uma recta de calibração em que relaciono a distância migrada (em cm) com o tamanho da molécula. Depois só tenho de medir a distância migrada pelos meus fragmentos desconhecidos e deduzir o seu tamanho a partir da recta.
5.1. Poderá corresponder a uma digestão do DNA lambda com a enzima EcoRI ou não? Porquê? Tendo em conta as posições de corte indicadas, a digestão do DNA lambda com EcoRI produz 6 fragmentos com os tamanhos de: 21226bp, 7421bp, 5804bp, 5643bp, 4878bp e 3530bp. Estes fragmentos são compatíveis com o número e distribuição das bandas observadas na imagem, pelo que é provável tratar-se da digestão de DNA lambda com EcoRI.
5.2. Considerando que a quantidade total de DNA presente neste gel é de um micrograma, relativamente a cada uma das bandas observadas: a. Quantas moléculas de DNA estão na primeira e na última banda observadas no gel?
A primeira banda contém 21226bp/48510bp = 44% da quantidade total de DNA aplicado no gel, enquanto que a última banda corresponde a 7,3% (3530bp/48510bp). Desta forma, a quantidade de DNA presente é de 440ng para a primeira banda e 73ng para a última banda.
Exercício 3 – Enzimas de restrição, RFLPs (Restriction Fragment Length Polymorphisms) e diagnóstico de mutaçõesAs variações de sequência do genoma humano podem resultar na alterção de locais de corte de enzimas de restrição. As bandas polimórficas observadas após a electroforese de amostras de DNA genómico após tratamento com enzimas de restrição (RFLPs) constituíram o primeiro método laboratorial de “impressões digitais” de DNA para identificação de indivíduos em Medicina legal e forense. Da mesma forma, mutações causadoras de doença podem gerar variações nos locais de corte de enzimas de restrição que permitem um fácil diagnóstico da sua presença. O gene humano que codifica a beta-globina possui 3 locais de restrição DdeI. A distância entre o primeiro e o segundo local é de 175 bp. A distância entre o segundo e o terceiro local é de 201 bp. Em indivíduos com anemia de células falciformes ocorre uma mutação que anula o segundo local de restrição DdeI.
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